摘要 腦出血病理生理機(jī)制是近年來(lái)研究的熱點(diǎn)。既往認(rèn)為，活動(dòng)性腦出血是一次
性的，腦出血后血腫壓迫微循環(huán)是引起腦組織損害的主要因素。但目前多數(shù)學(xué)者認(rèn)
為，腦出血患者于發(fā)病后有繼續(xù)出血現(xiàn)象，這種現(xiàn)象可導(dǎo)致早期病情惡化。腦出血
后血腫分解釋放多種活性物質(zhì)對(duì)腦組織具有損害作用，可表現(xiàn)為局部腦血流和代謝
的變化、腦水腫、血腦屏障的損害及對(duì)腦細(xì)胞的毒性損傷等諸多方面。?

腦出血的發(fā)生率、死亡率和致殘率均較高，目前臨床上除運(yùn)用傳統(tǒng)脫水藥外，治療
手段較少。人們希望通過(guò)對(duì)腦出血病理生理機(jī)制的進(jìn)一步研究為臨床治療提供新的
依據(jù)和方法。本文就腦出血后腦內(nèi)血腫病理的重新認(rèn)識(shí)，尤其是局部腦血流的變化
、腦水腫、血腦屏障的改變和腦細(xì)胞的毒性損傷等方面作一綜述。?

1 對(duì)腦內(nèi)血腫病理作用的重新認(rèn)識(shí)

既往認(rèn)為，活動(dòng)性腦出血多是一次性的，很少持續(xù)1 h以上，現(xiàn)在發(fā)現(xiàn)起病1 h后出
血仍可持續(xù)。Brott等[1]報(bào)道，至少有38%患者的血腫在腦出血后24 h內(nèi)有擴(kuò)大，
其中多數(shù)出現(xiàn)在3~4 h。少數(shù)病后2~14 d內(nèi)病情加重者也系血腫擴(kuò)大所致[2]。因此
，腦出血發(fā)病后仍有繼續(xù)出血現(xiàn)象，血腫擴(kuò)大多與病情，尤其是早期病情加重有關(guān)
[3]。血腫繼續(xù)擴(kuò)大多發(fā)生于以下情況：(1)年齡較輕；(2)病變部位較深，如丘腦
、殼核和腦干；(3)高血壓未能得到有效控制；(4)急驟過(guò)度脫水治療；(5)病前服
用阿司匹林或其他抗血小板藥；(6)血腫不規(guī)則。既往認(rèn)為，源于腦內(nèi)血腫的腦損
傷是血腫本身壓迫周圍腦組織的微循環(huán)，產(chǎn)生血腫周圍區(qū)域的腦缺血和水腫所致。
但目前認(rèn)為，除血腫本身的占位性損害外，尚有周圍腦組織血液循環(huán)障礙、代謝紊
亂(如酸中毒)、血管運(yùn)動(dòng)麻痹、血腦屏障受損和血液分解產(chǎn)物釋放多種生物活性物
質(zhì)對(duì)腦組織的損害。有學(xué)者用50 μl微氣囊充脹模型研究了單獨(dú)占位效應(yīng)引起的缺
血性改變，發(fā)現(xiàn)遠(yuǎn)隔區(qū)缺血性損傷明顯輕于注入同等血量的腦出血模型，說(shuō)明血液
分解釋放的多種活性物質(zhì)對(duì)腦組織有損害作用。?

2 局部腦血流的變化

實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn)，出血后血腫周圍組織的血流可出現(xiàn)短暫下降，其下降程度與血腫大
小呈正相關(guān)。在出血量相同的情況下，隨著時(shí)間的延長(zhǎng)局部腦血流(rCBF)一般也逐
漸下降。腦出血后雖存在缺血，但梗死的出現(xiàn)取決于缺血程度和持續(xù)時(shí)間。實(shí)驗(yàn)表
明，猴腦血流下降至10~12 ml/(100 g·min)達(dá)2~3 h才出現(xiàn)梗死，而血流量在25 
ml/(100 g·min)時(shí)，即使持續(xù)較長(zhǎng)時(shí)間也不會(huì)出現(xiàn)梗死[3]，而腦出血后腦血流的
改變均在缺血性損害的閾值15~20 ml/(100 g·min)以上，并且4 h內(nèi)均已恢復(fù)正常
。因此，腦出血后局部組織缺血的程度和時(shí)間均不足以導(dǎo)致缺血損害。?

3 腦水腫

既往認(rèn)為，腦出血后血腫壓迫微循環(huán)可引起周圍組織缺血，在腦出血后水腫的產(chǎn)生
中起主要作用。近年來(lái)的研究更多地集中在腦出血后局部血腫在腦水腫形成中的作
用，血腫釋放的某些活性物質(zhì)或血液本身的成分可能是腦水腫產(chǎn)生的物質(zhì)基礎(chǔ)。研
究發(fā)現(xiàn)，大鼠腦內(nèi)分別注入全血和陽(yáng)性腦脊液后，前者產(chǎn)生的水腫更為顯著，表明
腦出血后腦水腫與血腫本身的關(guān)系更為密切。?

3.1 凝血酶?

近年來(lái)，在腦出血后腦水腫形成的機(jī)制研究中，凝血酶成為人們最為關(guān)注的一個(gè)焦
點(diǎn)。凝血酶可誘發(fā)腦水腫形成，凝血酶抑制劑則可阻止凝血酶誘發(fā)的腦水腫形成，
因此，凝血酶被認(rèn)為是腦出血后腦水腫形成中較為重要的物質(zhì)[4-6]。1996年，Ke
vin在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，將全血或加入凝血酶原復(fù)合物的血漿注入大鼠基底節(jié)區(qū)可
誘發(fā)腦水腫，而將同樣未凝血的血漿或凝血后產(chǎn)生的血清注入大鼠腦內(nèi)卻未能誘發(fā)
腦水腫。另一方面，如果在全血中加入特異性的凝血酶抑制劑水蛭素，進(jìn)行同樣的
實(shí)驗(yàn)，則腦水腫亦不會(huì)出現(xiàn)。因此，Kevin認(rèn)為，凝血酶在腦出血后腦水腫的形成
中起重要作用[5]。同一年，Lee等用類似方法證實(shí)，另一種凝血酶抑制劑α-NAPA
P可減輕腦內(nèi)血腫邊緣腦水腫，而α-NAPAP并不能改變血凝塊的實(shí)際容積，這表明
凝血酶本身的化學(xué)刺激作用大于血凝塊的機(jī)械壓迫作用。Kevin在1997年的研究中
發(fā)現(xiàn)，腦組織中注入凝血酶后可破壞血腦屏障。他的實(shí)驗(yàn)還表明，通常腦出血的血
凝塊所產(chǎn)生的凝血酶能夠破壞腦細(xì)胞。上述結(jié)果表明，凝血酶對(duì)神經(jīng)細(xì)胞的毒性作
用和對(duì)血腦屏障的破壞可能是腦出血后腦水腫形成的重要機(jī)制之一。研究表明，腦
和脊髓組織中含有大量的凝血酶結(jié)合位點(diǎn)，低濃度凝血酶對(duì)腦細(xì)胞具有保護(hù)作用，
而高濃度凝血酶則會(huì)損傷腦細(xì)胞[7]，Xi等[8]在1999年的實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，低濃度凝血
酶對(duì)神經(jīng)細(xì)胞有保護(hù)作用，小劑量凝血酶預(yù)處理可減輕大劑量凝血酶注入大鼠尾狀
核后產(chǎn)生的腦水腫，這種作用可能與熱休克蛋白27(HSP27)的表達(dá)有關(guān)。由此可見(jiàn)
，凝血酶本身和凝血過(guò)程中產(chǎn)生的一系列物質(zhì)是引起腦出血早期腦水腫的重要因素
。臨床資料表明，腦出血后血凝塊釋放凝血酶的時(shí)間大約持續(xù)2周左右，與腦出血
后腦水腫持續(xù)的時(shí)間相符，也表明凝血酶是引起腦出血后腦水腫形成的主要原因。
水蛭素是凝血酶的特異性抑制劑，理論上可用于臨床治療。目前水蛭素肽Ⅰ已進(jìn)入
了臨床試驗(yàn)階段。?

3.2 血紅蛋白?

近年來(lái)的研究表明，腦內(nèi)注入濃縮血細(xì)胞或紅細(xì)胞并不能產(chǎn)生顯著的水腫。1998年
，Xi等[9]用動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究了紅細(xì)胞對(duì)自發(fā)性腦出血后腦水腫形成的影響。他們分
別將全血、壓積紅細(xì)胞、溶解紅細(xì)胞、鼠血紅蛋白和凝血酶注入大鼠右側(cè)基底節(jié)，
然后將大鼠在不同時(shí)間處死，檢測(cè)腦組織水分和鹽離子含量，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，注射溶解
紅細(xì)胞后24 h產(chǎn)生明顯腦水腫，而注入血紅蛋白可以模擬這種腦水腫的形成，注入
凝血酶后24~48 h出現(xiàn)腦水腫的高峰期，注入壓積紅細(xì)胞3 d后才引起腦組織水含量
增高[10]。因此，在腦出血后腦水腫形成的中、晚期，紅細(xì)胞的內(nèi)容物，如血紅蛋
白和ADP等起重要作用。?

3.3 血漿蛋白?

1996年，Wagner等[11]觀察到，豬腦葉出血后1 h，血腫周圍腦水分含量高于對(duì)側(cè)
10%，血腫周圍區(qū)域血清蛋白免疫活性很強(qiáng)，此時(shí)血管內(nèi)的Evans藍(lán)尚未進(jìn)入腦組織
，提示血腦屏障完整。這一結(jié)果表明，來(lái)源于血腫的血漿蛋白，聚積于血腫周圍白
質(zhì)并迅速引起了腦出血后腦水腫。?

3.4 其他影響因素?

1998年，Winking等[12]連續(xù)觀察了12例腦出血后手術(shù)治療的患者和5例保守治療的
患者，檢測(cè)治療前、后尿中半胱氨酸白細(xì)胞三烯(cys-LT)的代謝產(chǎn)物發(fā)現(xiàn)，cys-L
T含量與血腫周圍腦組織水含量顯著相關(guān)(P<0.01)，治療結(jié)束后，手術(shù)治療組尿中
白細(xì)胞三烯水平低于保守治療組(P<0.05)，因此認(rèn)為cys-LT可能是加劇腦出血后腦
水腫的一個(gè)因素。1998年，Mayer等[13]用SPECT觀察腦出血急性期血腫邊緣腦血流
的變化發(fā)現(xiàn)，水腫形成早期腦血流較低，但在72 h內(nèi)即恢復(fù)正常，而最初血腫邊緣
缺血再灌注的范圍影響了腦水腫的程度。這提示，血腫邊緣缺血的高峰期是出血后
的早期，而再灌注損傷是血腫邊緣水腫形成的發(fā)病機(jī)制之一。?

4 對(duì)血腦屏障的影響

血腫形成24 h后，同側(cè)大腦半球血腦屏障的滲透性明顯增高[14]。正常動(dòng)物注入凝
血酶可產(chǎn)生程度相同的血腦屏障破壞，提示凝血酶在血腦屏障破壞中起直接作用。
血腦屏障滲透性的明顯增高，可使腦水腫液明顯增多，加重腦水腫。對(duì)單個(gè)內(nèi)皮細(xì)
胞的超微結(jié)構(gòu)研究提示，凝血酶以劑量依賴方式增高通透性[15]。來(lái)源于不同組織
的內(nèi)皮細(xì)胞對(duì)凝血酶的反應(yīng)不同，極低濃度的凝血酶即可使腦內(nèi)皮細(xì)胞的形態(tài)學(xué)發(fā)
生明顯改變[16]。凝血酶破壞血腦屏障的確切機(jī)制尚不清楚，最近的研究顯示腦血
管內(nèi)皮細(xì)胞缺乏密集的凝血酶受體，因此可能與受體介導(dǎo)的途徑無(wú)明顯關(guān)系[17]。
此外，腦出血后4 h即可出現(xiàn)腦水腫，而此時(shí)血腦屏障的破壞尚不明顯，因此，腦
出血后早期腦水腫的形成與凝血酶對(duì)血腦屏障完整性的影響無(wú)關(guān)。?

5 對(duì)腦細(xì)胞的毒性損傷

大鼠尾狀核注血后10 min，尾狀核rCBF下降，3 h后rCBF恢復(fù)至接近正常，甚至輕
微過(guò)度灌注，而此時(shí)病理檢查發(fā)現(xiàn)仍存在缺血性損傷的形態(tài)學(xué)改變。Matz等[18]研
究rCBF與病理改變的關(guān)系證實(shí)，腦缺血性損傷的形態(tài)學(xué)改變并不因rCBF的恢復(fù)而好
轉(zhuǎn)，因此，腦出血后血腫周圍的腦細(xì)胞損傷可能與血液成分有關(guān)。研究證實(shí)，腦損
傷是腦血流量和腦代謝率降低的共同結(jié)果，兩個(gè)參數(shù)中任何一個(gè)紊亂均會(huì)導(dǎo)致腦損
傷。凝血酶的直接毒性在出血量為50 ml左右的腦血腫中，主要表現(xiàn)為通過(guò)影響代
謝而不是使血流下降引起細(xì)胞損傷。最近，Vaughan等[19]證明，小劑量凝血酶對(duì)
腦細(xì)胞具有保護(hù)作用，可激活神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞上的凝血酶受體，阻止細(xì)胞凋
亡，但稍大劑量的凝血酶對(duì)腦細(xì)胞具有損傷作用。腦出血后最初的腦損傷和水腫表
現(xiàn)為血流下降引起的代謝紊亂，這是由血腫中彌散入腦的凝血酶引起的，而代謝紊
亂導(dǎo)致了腦組織缺血壞死，甚至在腦血流高于一般腦缺血臨界水平時(shí)也發(fā)生這一改
變。研究者們認(rèn)為，早期的腦水腫是直接細(xì)胞毒性作用所致。這種毒性作用可能通
過(guò)細(xì)胞毒性受體或被凝血酶激活的酶原傳遞的，通過(guò)軸突、樹(shù)突引起其他神經(jīng)元和
神經(jīng)細(xì)胞突起回縮，造成細(xì)胞損傷[20]。凝血酶對(duì)腦細(xì)胞的毒性損傷作用，還可導(dǎo)
致腦細(xì)胞的電生理異常。?

6 小結(jié)

盡管近年來(lái)對(duì)腦出血病理生理機(jī)制的研究揭示了腦出血對(duì)腦損害的病理過(guò)程，明顯
改善了腦出血的治療現(xiàn)狀，但腦出血的病理生理機(jī)制十分復(fù)雜，對(duì)它的認(rèn)識(shí)有待進(jìn)
一步深入。 

參 考 文 獻(xiàn)

1 Brott T, Broderick J, Kothari R, et al. Early hemorrhage growth in pa
tients with intracerebral hemorrhage. Stroke, 1997, 28(1): 1-5.? 

2 Wijdicks EF, Fulgham JR. Acute fatal deterioration in putaminal hemor
rhage. Stroke, 1995, 26(10): 1953-1955.?

3 Kingman TA, Mendelow AD, Graham DE, et al. Experimental intracerebral
 hemorrhage mass description of model, intracranial pressure changes an
d neuropathology. J Neuropathol Exp Neurol,1998, 47(2): 118-137.?

4 Lee KR, Betz AL, Keep RF, et al. Intracerebral infusion of thrombin a
s a cause of brain edema. J Neurosurg, 1995, 83(6): 1045-1050.?

5 Lee KR, Colon GP, Betz AL, et al. Edema from intracerebral hemorrhage
: the role of thrombin. J Neurosurg, 1996, 84(1): 91-96.

6 Lee KR, Kawai N, Kim S, et al. Mechanisms of edema formation after in
tracerebral hemorrhage: effects of thrombin on cerebral blood flow, blo
od-brain barrier permeability, and cell survival in a rat model. J Neur
osurg, 1997, 86(2): 272-278.?

7 Vaughan PJ, Pike CJ, Cotman CW, et al. Thrombin receptor activation p
rotects neurons and astrocytes from cell death produced by environmenta
l insults. J Neurosci, 1995, 15(7 Pt 2): 5389-5401.?

8 Xi G, Keep R F, Hua Y, et al. Attenuation of thrombin-induced brain e
dema by cerebral thrombin preconditioning. Stroke, 1999 , 30(6): 1247-1
255.?

9 Xi G, Wagner KR, Keep RF, et al. Role of blood clot formation on earl
y edema development after experimental intracerebral hemorrhage. Stroke
, 1998, 29(12): 2580-2586.?

10 Xi G, Keep RF, Hoff JT. Erythrocytes and delayed brain edema formati
on following intracerebral hemorrhage in rats. J Neurosurg, 1998, 89(6)
: 991-996.?

11 Wagner KR, Xi G, Hua Y, et al. Lobar intracerebral hemorrhage model 
in pigs: rapid edema development in perihematomal white matter. Stroke,
 1996, 27(3): 490-497.?

12 Winking M, Deinsberger W, Joedicke A, et al. Cysteinyl-leukotriene l
evels in intracerebral hemorrhage: an edema-promoting factor? Cerebrova
sc Dis, 1998, 8(6): 318-326.?

13 Mayer SA, Lignelli A, Fink ME, et al. Perilesional blood flow and ?
edema? formation in acute intracerebral hemorrhage: a SPECT study. Str
oke, 1998, 29(9): 1791-1798.?

14 Yang GY, Betz AL, Chenevert TL, et al. Experimental intracerebral he
morrhage: relationship between brain edema, blood flow, and blood-brain
 barrier permeability in rats. J Neurosurg, 1994, 81(1): 93-102.?

15 Tatakis DN. Blood coagulation factors in periodontal pathophysiology
: a review with emphasis on the role of thrombin. Semin Thromb Hemost, 
1992, 18(1): 28-33.?

16 Belloni PN, Carney DH, Nicolson GL. Organ-derived microvessel endoth
elial cells exhibit differential responsiveness to thrombin and other g
rowth factors. Microvasc Res, 1992, 43(1): 20-45.?

17 Weinstein JR, Gold SJ, Cunningham DD, et al. Cellular localization o
f thrombin receptor mRNA in rat brain: expression by mesencephalic dopa
minergic neurons and codistribution with prothrombin mRNA. J Neurosci, 
1995, 15(4): 2906-2919.?

18 Matz PG, Weinstein PR, Sharp FR. Heme oxygenase-1 and heat shock pro
tein 70 induction in glia and neurons throughout rat brain after experi
mental intracerebral hemorrhage. Neurosurgery, 1997, 40(1): 152-162.?
19 Vaughan PJ, Pike CJ, Cotman CW, et al. Thrombin receptor activation 
protects neurons and astrocytes from cell death produced by environment
al insults. J Neurosci, 1995, 15(7 Pt 2): 5389-5401.?